培养细胞不贴壁
可能原因：1.胰蛋白酶消化过度；2.支原体污染；3.培养基pH值过碱（NaHCO3分解）；4.细胞老化；5.接种细胞起始浓度太低或太高。
解决方法：1.缩短胰蛋白酶消化时间或降低胰蛋白酶浓度；2.分离培养物，检测支原体。清洁支架或培养箱。如发现支原体污染，丢弃培养物；3.使用无菌醋酸溶液调整pH值或充入无菌CO2；4.启用新的保种细胞；5.调节最佳接种细胞浓度。

悬浮细胞成簇
可能原因：1.培养液中含钙,镁离子；2.支原体污染；3.蛋白酶过度消化使得细胞裂解；4.DNA污染。
解决方法：1.用无钙镁平衡盐溶液洗涤细胞，轻巧吹吸；2.细胞获得单细胞悬液；3.分离培养物，检测支原体；4.DNasel处理细胞。

培养细胞生长缓慢
可能原因：1.由于更换不同培养液或血清；2.培养液中一些细胞生长必须成分如谷氨酰胺或生长因子耗尽或缺乏或已被破坏；3.培养物中有少量细菌或真菌污染；4.试剂保存不当；5.接种细胞起始浓度太低；6.细胞已老化；7.支原体污染。
解决方法：
1.比较新培养液与原培养液成分，比较新血清与旧血清支持细胞生长实验，让细胞逐渐适应新培养液；2.换入新鲜配置培养液，或补加谷氨酰胺及生长因子；3.用无抗生素培养液培养，如发现污染，丢弃培养物；4.血清需保存在-10到-20℃。培养液需在2-8℃避光保存。含血清培养液在2-8℃保存，需在1周内用完；5.增加接种细胞起始浓度；6.换用新的保种细胞；7.分离培养物，检测支原体。清洁支架和培养箱。如发现支原体污染，丢弃培养物。