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用生化培養箱做免疫熒光實驗的流程如下： 1、細胞準備 （1）取出生長狀態良好的細胞，棄培養基，消化重懸細胞。（2）將24孔圓形爬片放入24孔板的孔中。 （3）根據細胞生長特性取適量細胞于已鋪爬片的24孔板中，放入37℃生化培養箱培養。 2、固定 （1）取出細胞，棄去培養基，用PBS洗細胞3次。 （2）每孔加入1mL的4%多聚甲醛，室溫固定10-20min，棄去多聚甲醛； （3）加入1mL的PBS清洗細胞，重復兩次。 3、通透 （1）每孔加入1mL的0.5% Triton-X100 ，室溫10min，棄去Triton-X100。 （2）加入1mL的PBS清洗細胞，5min，棄PBS。重復兩次。 4、封閉 每孔中加入1mL的3%BSA封閉液，室溫封閉1h。棄封閉液。 5、一抗結合 （1）向爬片上滴加稀釋好的一抗，用錫箔紙包住24孔板外面，輕柔的將24 孔板放置于4℃生化培養箱中，過夜孵育。 （2）加入1mL的PBS清洗細胞，5min，棄PBS。重復五次。 6、二抗結合 （1）加封閉液稀釋的二抗室溫避光孵育1h。 （2）加入1mL的PBS清洗細胞，5min，棄PBS。重復五次。 7、DAPI染色 （1）按照1：4000比例用1×PBS稀釋DAPI工作液（參照廠家說明書），并向每個孔中加入1mL的DAPI工作液，避光靜置染色10min。 （2）加入1mL的PBS清洗細胞，5min，棄PBS。重復三次。 8、封片及檢測 （1）將爬片小心取出，用吸水紙吸干多余液體，加5μl的抗熒光淬滅劑到載玻片上。 （2）將爬片倒置載玻片上，周圍涂指甲油固定。 （3）4℃生化培養箱暫存或直接激光共聚焦顯微鏡拍攝。
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