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用生化培养箱做免疫荧光实验的流程如下： 1、细胞准备 （1）取出生长状态良好的细胞，弃培养基，消化重悬细胞。（2）将24孔圆形爬片放入24孔板的孔中。 （3）根据细胞生长特性取适量细胞于已铺爬片的24孔板中，放入37℃生化培养箱培养。 2、固定 （1）取出细胞，弃去培养基，用PBS洗细胞3次。 （2）每孔加入1mL的4%多聚甲醛，室温固定10-20min，弃去多聚甲醛； （3）加入1mL的PBS清洗细胞，重复两次。 3、通透 （1）每孔加入1mL的0.5% Triton-X100 ，室温10min，弃去Triton-X100。 （2）加入1mL的PBS清洗细胞，5min，弃PBS。重复两次。 4、封闭 每孔中加入1mL的3%BSA封闭液，室温封闭1h。弃封闭液。 5、一抗结合 （1）向爬片上滴加稀释好的一抗，用锡箔纸包住24孔板外面，轻柔的将24 孔板放置于4℃生化培养箱中，过夜孵育。 （2）加入1mL的PBS清洗细胞，5min，弃PBS。重复五次。 6、二抗结合 （1）加封闭液稀释的二抗室温避光孵育1h。 （2）加入1mL的PBS清洗细胞，5min，弃PBS。重复五次。 7、DAPI染色 （1）按照1：4000比例用1×PBS稀释DAPI工作液（参照厂家说明书），并向每个孔中加入1mL的DAPI工作液，避光静置染色10min。 （2）加入1mL的PBS清洗细胞，5min，弃PBS。重复三次。 8、封片及检测 （1）将爬片小心取出，用吸水纸吸干多余液体，加5μl的抗荧光淬灭剂到载玻片上。 （2）将爬片倒置载玻片上，周围涂指甲油固定。 （3）4℃生化培养箱暂存或直接激光共聚焦显微镜拍摄。
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